Transcriptional activity and splicing factors are preserved during physiological apoptosis
Por:
Castro-Cruz, A., Echeverria, O. M., Juarez-Chavero, S., Sanchez-Sanchez, L., Torres-Ramirez, N., Vazquez-Nin, G. H., Muñoz-Velasco I., Escobar, M. L.
Publicada:
1 sep 2022
Categoría:
Structural biology
Resumen:
Apoptosis is the best-known programmed cell death that maintains tissue
homeostasis in eukaryotic cells. The morphological characteristics
include nuclear and cytoplasmic contraction and cytoplasmic blebbing,
its biochemical hallmarks include caspase protease activity and DNA
fragmentation. In rat ovaries, cell death is a normal process that
occurs throughout the organism's life. Granulosa cells, the more
abundant cell type forming the ovarian follicles, are eliminated via
different routes of cell death. Most granulosa cells are eliminated
through apoptotic cell death. In this work, we analyzed the behavior of
nuclear components throughout the apoptotic process and determined how
they are regionalized and conserved during follicular atresia in rat
ovaries. Apoptosis was detected based on caspase-3 activity and DNA
fragmentation using the TUNEL technique. We identified the transcription
markers H3ac and RNA Pol II, and splicing factor SC35 by
immunodetection. The nucleolar components were analyzed via light
microscopy and transmission electron microscopy through immunodetection
of the proteins nucleolin and nucleophosmin-1. The nuclear
ultrastructure was analyzed using standard contrast and preferential
ribonucleoprotein contrast. Our results demonstrate that during the
pro-gression of apoptosis, chromatin is remodeled to constitute
apoptotic bodies; transcription and spliceosome el-ements are
reorganized along with the nucleolar components. Additionally, the
splicing and transcription factors are segregated into specific
territories inside the apoptotic bodies, suggesting that transcriptional
elements are reorganized during the apoptotic process. Our results
indicate that apoptotic bodies not only are compacted, and chromatin
degraded but all the nuclear components are progressively reorganized
during cell elimination; moreover, the transcriptional components are
preserved.
Filiaciones:
Castro-Cruz, A.:
Laboratorio de Microscopía Electrónica, Depto. Biología Celular, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Av. Universidad 3000, Ciudad Universitaria, Col. Universidad Nacional Autónoma de México, Coyoacán, Ciudad de México 04510, Mexico
Univ Nacl Autonoma Mexico, Col Univ Nacl Autonoma Mexico, Fac Ciencias, Dept Biol Celular,Lab Microscop Elect, Av Univ 3000, Ciudad De Mexico 04510, Mexico
Echeverria, O. M.:
Laboratorio de Microscopía Electrónica, Depto. Biología Celular, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Av. Universidad 3000, Ciudad Universitaria, Col. Universidad Nacional Autónoma de México, Coyoacán, Ciudad de México 04510, Mexico
Univ Nacl Autonoma Mexico, Col Univ Nacl Autonoma Mexico, Fac Ciencias, Dept Biol Celular,Lab Microscop Elect, Av Univ 3000, Ciudad De Mexico 04510, Mexico
Juarez-Chavero, S.:
Laboratorio de Microscopía Electrónica, Depto. Biología Celular, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Av. Universidad 3000, Ciudad Universitaria, Col. Universidad Nacional Autónoma de México, Coyoacán, Ciudad de México 04510, Mexico
Univ Nacl Autonoma Mexico, Col Univ Nacl Autonoma Mexico, Fac Ciencias, Dept Biol Celular,Lab Microscop Elect, Av Univ 3000, Ciudad De Mexico 04510, Mexico
Sanchez-Sanchez, L.:
Laboratorio de Biología Molecular del Cáncer, UMIEZ, Facultad de Estudios Superiores Zaragoza, Universidad Nacional Autónoma de México, Lab. 6, 2do piso, Ejercito de Oriente, Iztapalapa, México, Ciudad de México 09230, Mexico
Univ Nacl Autonoma Mexico, Fac Estudios Super Zaragoza, Lab Biol Mol Canc, UMIEZ, Lab 6,2Do Piso, Ciudad De Mexico 09230, Mexico
Torres-Ramirez, N.:
Laboratorio de Microscopía Electrónica, Depto. Biología Celular, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Av. Universidad 3000, Ciudad Universitaria, Col. Universidad Nacional Autónoma de México, Coyoacán, Ciudad de México 04510, Mexico
Univ Nacl Autonoma Mexico, Col Univ Nacl Autonoma Mexico, Fac Ciencias, Dept Biol Celular,Lab Microscop Elect, Av Univ 3000, Ciudad De Mexico 04510, Mexico
Vazquez-Nin, G. H.:
Laboratorio de Microscopía Electrónica, Depto. Biología Celular, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Av. Universidad 3000, Ciudad Universitaria, Col. Universidad Nacional Autónoma de México, Coyoacán, Ciudad de México 04510, Mexico
Univ Nacl Autonoma Mexico, Col Univ Nacl Autonoma Mexico, Fac Ciencias, Dept Biol Celular,Lab Microscop Elect, Av Univ 3000, Ciudad De Mexico 04510, Mexico
Muñoz-Velasco I.:
Laboratorio de Microscopía Electrónica, Depto. Biología Celular, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Av. Universidad 3000, Ciudad Universitaria, Col. Universidad Nacional Autónoma de México, Coyoacán, Ciudad de México 04510, Mexico
Escobar, M. L.:
Laboratorio de Microscopía Electrónica, Depto. Biología Celular, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Av. Universidad 3000, Ciudad Universitaria, Col. Universidad Nacional Autónoma de México, Coyoacán, Ciudad de México 04510, Mexico
Univ Nacl Autonoma Mexico, Col Univ Nacl Autonoma Mexico, Fac Ciencias, Dept Biol Celular,Lab Microscop Elect, Av Univ 3000, Ciudad De Mexico 04510, Mexico
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